Steps for
Cleaning Binocular Microscopes in a Histology Lab
1.
Turn Off and Unplug – Ensure
the microscope is turned off and unplugged before cleaning.
2.
Remove Dust – Use a soft
brush or air blower to remove dust from the surface.
3.
Clean Eyepieces and Lenses – Use lens paper with a few drops of lens cleaning
solution, xylene, or spirit (ethanol or isopropyl alcohol) to gently
wipe the eyepieces, objective lenses, and condenser. Avoid using tissue paper
or rough cloth. Xylene is effective for removing oil immersion residues,
while spirit helps disinfect and remove smudges.
4.
Clean the Stage and Body –
Use a microfiber cloth dampened with 70% isopropyl alcohol or spirit to
wipe the stage, knobs, and body of the microscope. Do not use xylene on plastic
parts, as it may damage them.
5.
Check and Adjust – Ensure all
moving parts, like the focus and stage adjustment knobs, are functioning
smoothly.
6.
Store Properly – After
cleaning, cover the microscope with a dust cover and store it in a dry, safe
place.
🔹 Precaution: Xylene should be used in a
well-ventilated area with gloves, as it is toxic and can cause irritation.
Always apply solutions on lens paper or a cloth rather than directly on
microscope parts.
میڈیکل کالج کی اناٹومی ڈیپارٹمنٹ میں ہسٹالوجی
لیب کے بائنوکولر مائیکروسکوپس کی صفائی کے اہم مراحل
1.
بند کریں اور
پلگ نکالیں – صفائی سے پہلے مائیکروسکوپ کو بند کر کے پلگ نکال
دیں۔
2.
گرد صاف کریں – ایک نرم برش یا ایئر بلور کا استعمال کریں تاکہ
سطح سے گرد ہٹائی جا سکے۔
3.
آئی پیس اور
لینز صاف کریں – لینز پیپر پر
تھوڑا سا لینز کلیننگ سلوشن، زائلین (Xylene) یا اسپریٹ (Ethanol یا Isopropyl Alcohol) لگا کر
آئی پیس، آبجیکٹو لینز اور کنڈینسر کو نرمی سے صاف کریں۔ ٹشو پیپر یا عام کپڑے کا
استعمال نہ کریں۔
o
زائلین تیل کے نشانات
دور کرنے کے لیے مفید ہے۔
o
اسپریٹ لینز کو
جراثیم سے پاک کرنے اور دھبے ہٹانے کے لیے مؤثر ہے۔
4.
اسٹیج اور باڈی
صاف کریں – 70% آئسوپروپائل
الکحل یا اسپریٹ میں ہلکا سا بھیگا ہوا مائیکرو فائبر کپڑا استعمال کرکے اسٹیج، نوبز
اور مائیکروسکوپ کی باڈی کو صاف کریں۔
o
نوٹ: زائلین
پلاسٹک کے حصوں پر استعمال نہ کریں کیونکہ یہ انہیں نقصان پہنچا سکتا ہے۔
5.
چیک کریں اور
ایڈجسٹ کریں – یقینی بنائیں
کہ فوکس اور اسٹیج ایڈجسٹمنٹ نوبز درست طریقے سے کام کر رہے ہیں۔
6.
محفوظ طریقے سے
اسٹور کریں – صفائی کے بعد مائیکروسکوپ کو ایک ڈسٹ کور سے
ڈھانپ کر خشک اور محفوظ جگہ پر رکھیں۔
🔹 احتیاط:
- زائلین کا
استعمال ہوا دار جگہ میں کریں اور دستانے پہنیں، کیونکہ یہ نقصان دہ ہو سکتا
ہے۔
- صفائی کے
لیے کسی بھی محلول کو براہ راست مائیکروسکوپ پر نہ ڈالیں، بلکہ پہلے اسے لینز
پیپر یا کپڑے پر لگائیں۔
SOPs for Handling Broken Slides and Using a Spill Kit in a Histology Lab
🔹
Important Steps for Cleaning Up Broken Slides
1.
Exercise Caution – If a slide
breaks, alert others and ensure no one gets injured.
2.
Wear Gloves – Put on nitrile
or latex gloves to protect your hands.
3.
Collect Glass Pieces –
o Use forceps or a dustpan and
brush to pick up large pieces—never use your hands.
o For small fragments, use a wet
filter paper or adhesive tape to collect them.
4.
Dispose of Properly – Place
all broken glass in a sharps container or a designated glass waste bin.
🔹 If a
Chemical Spill Occurs (Using a Spill Kit)
1.
Get the Spill Kit – Use the spill
kit available in the lab.
2.
Absorb the Chemical – If a
stain or fixative (like xylene or formalin) spills:
o Sprinkle absorbent pads or
vermiculite over the liquid to soak it up.
o If xylene spills, use activated
charcoal to neutralize it.
3.
Clean the Area –
o Use 70% alcohol or a neutral
cleaning solution to wipe the affected surface.
o Apply a disinfectant spray
afterward.
4.
Dispose of Waste Properly –
o Place used absorbent materials,
contaminated gloves, and paper towels in a biohazard waste bag.
o Follow the lab’s waste
disposal protocols.
🔹 Safety
Guidelines
These SOPs are essential for ensuring safety in any
laboratory setting. 🚨
ہسٹالوجی
لیب میں ٹوٹی ہوئی سلائیڈز کو سنبھالنے کے لیے
اور
اسپِل کٹ کے استعمال کے اقدامات
🔹 اہم
اقدامات برائے ٹوٹی ہوئی سلائیڈ کی صفائی
1.
احتیاط برتیں – جیسے ہی کوئی سلائیڈ ٹوٹے، کسی کو خبردار کریں
اور خود کو یا دوسروں کو زخمی ہونے سے بچائیں۔
2.
دستانے پہنیں – نائٹریل یا لیٹیکس دستانے پہنیں تاکہ ہاتھ محفوظ
رہیں۔
3.
شیشے کے ٹکڑوں
کو اکٹھا کریں –
o
بڑے ٹکڑوں کو فورسپس
یا ڈسٹ پین
(Dustpan) اور برش سے اکٹھا کریں، ہاتھوں کا استعمال نہ کریں۔
o
چھوٹے ذرات کے
لیے گیلے فلٹر پیپر یا چپکنے والے ٹیپ کا استعمال کریں۔
4.
مخصوص شیشے کے
ویسٹ کنٹینر میں ڈالیں – تمام شیشے کے
ٹکڑوں کو شارپس کنٹینر یا مخصوص شیشے کے فضلے کے ڈبے میں ڈالیں۔
🔹 اگر کیمیکل
اسپِل ہو جائے (اسپِل کٹ کا استعمال)
1.
اسپِل کٹ
نکالیں – لیبارٹری میں دستیاب اسپِل کٹ استعمال
کریں۔
2.
کیمیکل کو جذب
کریں – اگر کوئی اسٹین یا فکسٹیو (جیسے زائلین یا
فارملین) گرا ہو:
o
جاذب پیڈ (Absorbent Pads) یا ورمیکیولائٹ (Vermiculite) چھڑک کر مائع کو جذب کریں۔
o
اگر زائلین گرا
ہے تو چالو چارکول
(Activated Charcoal) استعمال کریں۔
3.
صفائی کریں –
o
70% الکحل یا نیوٹرل کلیننگ سلوشن سے جگہ کو صاف
کریں۔
o
ڈس انفیکٹینٹ
اسپرے کا
استعمال کریں۔
4.
ویسٹ کو درست
طریقے سے ضائع کریں –
o
جاذب مواد اور
آلودہ دستانے/پیپر تولیے بائیو-ہیزرڈ ویسٹ بیگ میں ڈالیں۔
o
لیبارٹری کے
مخصوص ویسٹ پروٹوکول پر عمل کریں۔
🔹 حفاظتی گائیڈ
لائنز
✅ لیبارٹری میں ہمیشہ شارپس ڈسپوزل کنٹینر اور
اسپِل کٹ دستیاب رکھیں۔
✅ ننگے
ہاتھوں سے شیشہ نہ چھوئیں، ہمیشہ فورسپس یا برش استعمال کریں۔
✅ ٹوٹے
ہوئے سلائیڈ کی اطلاع لیب سپروائزر یا سیکیورٹی انچارج کو دیں۔
✅ ایمرجنسی
آئ واش اسٹیشن اور ہینڈ واش کا استعمال کریں اگر کوئی کیمیکل چھٹک جائے۔
یہ
SOPs کسی
بھی لیب میں حفاظت کو یقینی بنانے کے لیے ضروری ہیں۔ 🚨
0 Comments